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第一部分　普通生物化学实验1

一、基础实验1

实验一　微量凯氏（Kjeldahl）定氮法1

实验二　氨基酸的分离鉴定——纸层析法4

实验三　蛋白质的性质实验（一）——蛋白质及氨基酸的呈色反应6

实验四 蛋白质的性质实验（二）——蛋白质的等电点测定和沉淀反应14

实验五　血清蛋白的醋酸纤维薄膜电泳19

实验六　核酸的定量测定——定磷法21

实验七　酵母核糖核酸的分离及组分鉴定25

实验八　酶的特性27

二、开放及综合设计性实验32

实验九　血糖的定量测定（Hagedorn-Jensen二氏定糖法）32

实验十　脂肪酸的β-氧化35

实验十一　血液中转氨酶活力的测定（分光光度法）37

实验十二 2,6-二氯酚靛酚法测定维生素C的含量40

实验十三　过氧化氢酶的作用42

实验十四　过氧化物酶的作用43

实验十五　尿液淀粉酶活力测定（Winslow氏法）45

实验十六　柑橘皮提取果胶47

第二部分　生物化学技术大实验48

一、基础实验48

实验一　离子交换柱层析法分离氨基酸48

实验二　蛋白质含量的测定51

实验三　凝胶过滤法测定蛋白质相对分子质量57

实验四 薄层层析法分离AMP、ADP和ATP60

实验五　动物肝脏DNA的制备和含量测定62

实验六　DNA的琼脂糖凝胶电泳65

二、开放及综合设计性实验69

实验七　SDS-聚丙烯酰胺电泳法测定蛋白质相对分子质量69

实验八　DNS-Cl法分析蛋白质N-末端氨基酸77

实验九　酵母蔗糖酶的提取及纯化80

实验十　蔗糖酶动力学研究89

实验十一　脲酶动力学研究100

实验十二　乳酸脱氢酶（LDH）同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）105

实验十三　L-谷氨酸脱羧酶的固定化111

实验十四　枯草杆菌细胞固定化113

实验十五　细胞色素c的制备及测定114

实验十六　大鼠肝细胞的单细胞凝胶电泳120

第三部分　分子生物学实验123

一、基础实验123

实验一　质粒DNA的提取123

实验二　质粒DNA的酶切及凝胶电泳129

实验三　大肠杆菌感受态细胞的制备及转化135

实验四　重组质粒的连接、转化及筛选139

实验五　基因组DNA的提取及检测144

实验六　RNA的分离与纯化149

实验七　PCR基因扩增152

实验八　DNA片段的回收与纯化156

实验九　外源基因在大肠杆菌中的诱导及表达158

实验十　核酸杂交技术160

实验十一　双向聚丙烯酰胺凝胶电泳165

二、开放及综合设计性实验169

实验十二　用exoⅢ外切酶构建亚克隆169

实验十三　利用T载体克隆绿色荧光蛋白（GFP）基因172

实验十四　cDNA文库构建175

三、分子生物学新实验技术180

第一节　生物芯片技术180

第二节　核糖核酸干扰技术（RNAi技术）186

第三节　原位核酸分子杂交技术190

附录195

附录一　实验室规则195

附录二　实验室安全及防护知识196

附录三　实验室常识199

附录四　常用数据表201

附录五　核酸基础数据207

附录六　缓冲溶液208

附录七　常用缓冲液的配制209

附录八　常用贮存液的配制215